1樓:匿名使用者
細胞凍存是細胞儲存的主要方法之一。利用凍存技術將細胞置於一196~c液氮中低溫儲存,可以使細胞暫時脫離生長狀態而將其細胞特性儲存起來,這樣在需要的時候再復甦細胞用於實驗。而且適度地儲存一定量的細胞,可以防止因正在培養的細胞被汙染或其他意外事件而使細胞丟種,起到了細胞保種的作用。
除此之外,還可以利用細胞凍存的形式來購買、寄贈、交換和運送某些細胞。 細胞凍存時向培養基中加入保護劑--終濃度5%.15%的甘油或二甲基亞碸(dmso),可使溶液冰點降低,加之在緩慢凍結條件下,細胞內水分透出,減少了冰晶形成,從而避免細胞損傷。
採用"慢凍快融"的方法能較好地保證細胞存活。標準冷凍速度開始為-1 到 -2℃/min,當溫度低於-25℃時可加速,到-80℃之後可直接投入液氮內(-196℃)。復甦細胞時則直接將裝有細胞的凍存管投入40℃熱水中迅速解凍。
材料:凍存管,離心管,細胞培養用材料,500 ml燒杯,膠布,搪瓷杯,75%酒精棉。
藥品:培養基(rpmi1640或dmem),小牛血清,胰蛋白酶溶液,二甲基亞碸(dmso)或甘油,臺盼藍染液,液氮。
儀器:4℃冰箱,-70℃冰箱,液氮容器,微量加樣器,水浴鍋,離心機。
一)細胞凍存。
1.取待凍存的細胞用胰酶消化(見相關實驗細胞傳代培養部分),用培養基將細胞沖洗下來。800 r/min離心5 min,棄上清收集細胞。
如果是懸浮生長的細胞,則可直接離心收集細胞。
2.加入適量凍存液(10%甘油+90%培養基,或者10%dmso+90%培養基)製成細胞懸液。細胞濃度宜大,3×106個/ml左右,並可適量增加牛血清濃度至20%。
3.細胞懸液裝入凍存管中。用膠布封裹,做好標記(寫上細胞種類、時間及凍存條件等)。
4.凍存管在4℃下存放30 min,轉放-20℃ h,再轉人-70℃ 4-12 h後即可轉移到液氮內(-196℃),注意進行登記。
二)細胞復甦。
1.取一搪瓷杯盛上適量自來水加熱至40℃左右。
2.從液氮中取出凍存管立即投人40℃水中迅速解凍。
3.取出凍存管,用75%酒精清潔管口,開啟。
4.離心去上清收集細胞,用無血清培養基洗1次,加人3 ml新鮮培養基,於小培養瓶中培養。
5.每日觀察細胞生長情況,如果死細胞較多,復甦次日應換液。待細胞長滿後可進行傳代培養。
2樓:外遇
在冰箱的溫度下細胞的所有生物代謝活動幾乎完全停止,酶和各種蛋白質的活性為零,活細胞處於靜止的狀態,但並不破壞細胞膜的完整和蛋白質的結構。溫度快速回升後,細胞能夠繼續存活。
一般培養細胞在-80攝氏度(低溫冰箱)或-196攝氏度(液氮)中儲存,-80只能短期儲存,液氮中一般能夠儲存一年以上。在這樣的溫度下細胞的所有生物代謝活動幾乎完全停止,酶和各種蛋白質的活性為零,活細胞處於靜止的狀態,但並不破壞細胞膜的完整和蛋白質的結構。溫度快速回升後,細胞能夠繼續存活。
動物細胞培養基中新增飼養細胞的的作用?
3樓:相信未來
新增飼養細胞的作用是促進細胞的發育。
動物細胞培養(animal cell culture)就是從動物機體中取出相關的組織,將它分散成單個細胞(使用胰蛋白酶或膠原蛋白酶)然後,放在適宜的培養基中,讓這些細胞生長和增殖。
細胞培養是指細胞在體外條件下的生長,動物細胞在單獨細胞培養的過程中不再形成個體。
體外細胞培養所需營養物質與體內基本相同,例如,需要糖、氨基酸、無機鹽、促生長因子、微量元素等。將細胞所需的上述物質按其種類和所需數量嚴格配製而成的培養基,稱為合成培養基。
由於動物細胞生活的內環境還有一些成分尚未研究清楚,所以需要加入動物血清以提供一個類似生物體內的環境,因此在使用合成培養基時,通常需加入血清、血漿等一些天然成分。
動物細胞培養中細胞如何凍存?
4樓:損害
細胞凍存的原則是:凍存緩慢降溫,復甦快速升溫。不同的動物細胞稍微有點不同,下面是一般的方法:
一)細胞凍存。
1. 配製含10%dmso或甘油、10~20%小牛血清的凍存培養液;
2. 取對數生長期的細胞,用胰蛋白酶把單層生長的細胞消化下來,懸浮生長的細胞則直接將細胞移至15ml離心管中、;
3. 離心1000rpm,5min;
4. 去除胰蛋白酶及舊的培養液,加入適量配製好的凍存培養液,用吸管輕輕吹打使細胞均勻,計數,調節凍存液中細胞的最終密度為5×106/ml~1×107/ml;
5. 將細胞分裝入凍存管中,每管1~ ml;
6. 在凍存管上標明細胞的名稱,凍存時間及操作者;
7. 凍存:標準的凍存程式為降溫速率-1~-2℃/ min;當溫度達-25℃以下時,可增至-5℃~-10℃/
min;到-100℃時,則可迅速浸入液氮中。也可將裝有細胞的凍存管放入-20℃冰箱2h ,然後放入-70℃冰箱中過夜,取出凍存管,移入液氮容器內。
二) 細胞復甦。
1. 從液氮容器中取出凍存管,直接浸入37℃溫水中,並不時搖動令其儘快融化。
2. 從37℃水浴中取出凍存管,開啟蓋子,用吸管吸出細胞懸液,加到離心管並滴加10倍以上培養液,混勻;
3. 離心, 1000rpm,5min;
4. 棄去上清液,加入含10%小牛血清培養液重懸細胞,計數,調整細胞密度,接種培養瓶,37℃培養箱靜置培養;
5. 次日更換一次培養液,繼續培養。
5樓:隨儂
簡單說一下步驟。
1.將70%~80%密度,生長良好的細胞用atv消化,離心,倒掉培養基。
2.用fbs清洗細胞兩次,離心。
3.加900微升fbs吹打懸浮細胞,並置於凍存管,向凍存管加入100微升dmso,迅速上下顛倒混勻。
4.將凍存管用醫用白膠布密封,置於凍存盒中,將凍存盒置於-80冰箱,24小時後取出置於液氮長期凍存。若沒有凍存盒,可對凍存管採用梯度凍存,從-20,-80,再到液氮的方法。
6樓:匿名使用者
傳代時如有少量富餘細胞,應立即作為種細胞儲備凍存,加以保管,不得用作常規實。
驗之用。利用凍存的種細胞儲備可製備和補充工作細胞儲備。如果種細胞儲備用盡,可利用凍存的工作細胞儲備製備新的種細胞儲備,這樣與最初凍存時相比,細胞代數。
增加較少。對培養的細胞進行凍存的最佳方法是將細胞置於含有二甲基亞碸 (dmso) 等冷凍保護劑。
的完全培養基中於液氮中儲存。冷凍保護劑可降低培養基的冰點,並可減緩冷卻速度,大大降低冰晶形成的危險 (冰晶可損傷細胞,導致細胞死亡)。
注:dmso 可促進有機分子進入組織。操作含 dmso 的試劑時,應採用與此類物質安全。
危害相適應的裝置和操作規範,並應按照當地法規處置此類試劑。
7樓:匿名使用者
不知道,用壓縮的氮氣吧?
動物細胞培養的一般步驟是什麼?
8樓:網友
一、復甦。
1.把凍存管從液氮中取出來,立即投入37℃水浴鍋中,輕微搖動。液體都融化後(大概分鐘),拿出來噴點酒精放到超淨工作臺裡。
2.把上述細胞懸液吸到裝10ml培養基的15ml的離心管中(用培養基把凍存管洗一遍,把粘在壁上的細胞都洗下來),1000轉離心5分鐘。
3.把上清液倒掉,加1ml培養基把細胞懸浮起來。吸到裝有10ml培養基的10cm培養皿中前後左右輕輕搖動,使培養皿中的細胞均勻分佈。
4.標好細胞種類和日期、培養人名字等,放到co2培養箱中培養,細胞貼壁後換培養基。
天換一次培養基。
二、傳代。1.培養皿中的細胞覆蓋率達到80%-90%時要傳代。
2.把原有培養基吸掉。
3.加適當的胰蛋白酶(能覆蓋細胞就行),消化1-2分鐘。
4.細胞都變圓後加如入等體積的含血清的培養基終止消化。
5.用移液槍吹打細胞,把細胞都懸浮起來。
6.把細胞吸到15ml的離心管中,1000轉離心5分鐘。
7.倒掉上清液,加1-2ml培養基,把細胞都吹起來。
8.根據細胞種類把細胞傳到幾個培養皿中。一般,癌細胞分5個,正常細胞傳3個。繼續培養。
三、 凍存。
把細胞消化下來並離心(同上)。用配好的凍存液把細胞懸浮起來,分裝到滅菌的凍存管中,靜止幾分鐘,寫明細胞種類,凍存日期。4℃ 30min,-20℃ 30min,-80℃過夜,然後放到液氮灌中儲存。
凍存液的配製: 70%的完全培養基 20
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