1樓：百泰派克生物科技
在使用液相色譜質譜儀（lc-ms）檢測葡萄糖時，通常採用正離子模式。這是因為葡萄糖等糖類化合物在正離子模式下更容易形成離子，並且通常具有更好的訊號強度和靈敏度。
在lc-ms的正離子模式下，葡萄糖分子可以通過與金屬離子（如鈉或鉀）形成加合物或通過其他機制獲得正電荷。這使得它們在質譜儀中更容易被檢測到。然而，需要注意的是，糖類化合物的離子化效率通常不如其他型別的有機化合物高，因此實驗條件（如移動相的ph值、有機溶劑的種類和比例、離子源的引數等）需要仔細優化以獲得最佳的檢測效果。
在特定的情況下，如某些衍生化策略或特殊的分析需求，也可能使用負離子模式。但在大多數情況下，分析糖類化合物，特別是像葡萄糖這樣的單糖，正離子模式是首選。
為什麼質譜正離子模式比負離子模式雜質干擾更大
2樓：
因為大多數分子結構容易產生正離子，而負離子模式下主要酸性強的結構訊號會比較強。
用esi-ms檢測靈芝三萜酸用正離子模式還是負離子模式
3樓：匿名使用者
你可以兩個模式一起選，你可以看看文獻，一般是負離子模式比較多。
苯酚在質譜下適合測正離子模式，什麼適合負離子
4樓：網友
正離子模式：[m+h]+、m+nh4]+、m+na]+、m+km+h]+等，負離子模式：[m-hm-h]-、m+b]- b是酸根離子）等。
負離子模式下也可以用甲酸或乙酸，流動相不用換。
為什麼質譜中葡萄糖基都是c6h11o
5樓：星源
正離子模式下，葡萄糖容易加氫離子，變成c6h13o6（+）從而帶上正電荷，但是由於其含有多個羥基，在高溫和高電壓下容易脫水（減去乙個h2o），因而在質譜圖上就容易看到c6h11o5的峰。
6樓：網友
正離子模式，跟據離子優勢選擇。高效液相色譜的流動相通常是各種低沸點溶劑和水溶液。它是影響分離的乙個非常重要因素。
在實際工作中，流動相的選擇和優化是確定色譜分析的主要工作。一、流動相溶劑的選擇1.所選用的流動相溶劑要有一定的化學穩定性，不與固定相和樣品組分起反應，其純度和化學特性必須滿足色譜過程的穩定性和重複性的要求。
2.溶劑應當不干擾檢測器的工作，溶劑應與檢測器匹配，選擇不影響檢測器正常工作應選擇在測定波長範圍內無吸收的流動相。3.
在製備分離中，溶劑應當易於除去，不干擾對分離組分的**。4.溶劑的粘度要小，保證合適的柱壓降。
5.從實用角度考慮，溶劑應當**低廉，容易購得，使用安全，純度要高。二、流動相溶劑使用的注意事項1.
流動相溶劑應選擇hplc的溶劑或依此為標準的溶劑。流動相使用前用濾膜過濾、脫氣，清除微粒和灰塵。在送液幫浦內，為了防止雜物（固體）進入流路，裝有吸濾器，但網孔徑為10μm，比此更小的顆粒仍然可通過，這會導致流路和柱子堵塞和汙染。
為此，建議常用濾膜過濾。流動相溶劑須經脫氣，如不脫氣，在溶劑混合時，或壓力溫度變化時容易產生大量氣泡，會導致幫浦誤動作和輸液不暢，檢測器產生雜訊訊號等。2.
流動相恢復到室溫後使用。流動相溫度與室溫相差時，流動相在恢復到室溫前，基線水平很難穩定，特別是發生漂移，也容易產生氣泡等現象。水與有機溶劑混合時，混合液變化大，往往會與室溫相差很大，務必注意。
3.做hplc流動相的試劑應用hplc級的、水應用二次蒸餾水，水相流動相需經常更換，防止長菌變質。使用去離子水、針劑水、純淨水（炊用）並不合適、尤其是做梯度洗脫時，水中的不純物會成為鬼峰，從而干擾分析結果。
4.流動相的ph值過高或過低，流動相使用純水，使用高濃度磷酸鹽緩衝溶液，使用離子對試劑等，均可能造成色譜柱填料被化學破壞，這種對色譜柱固定相及鍵合相的破壞通常是不可修復的5.用緩衝鹽做流動相時，在使用前和使用後都要用水清洗流路，絕對禁止將緩衝溶液留在流路中靜置過夜或更長時間。
膽酸類在正離子模式還是在負離子模式下檢測好
7樓：
正模式和負模式下，裝置上加的電場的方向是相反的，正模式下收集帶正電的離子，負模式下收集帶負電的離子。兩個模式分別適用於不同的樣品；也分別需要不同的定容試劑和流動相（正模式用酸性的，負模式用鹼性的），以促進待測物的電離。
8樓：尛幸甚至哉
用軟電力式般實驗條件掉羧酸根般都脫質。
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